超分辨STED顯微鏡對樣品的要求較多，涉及厚度、光學特性、熒光標記、蓋玻片與封片劑選擇及活細胞成像條件等多個方面，具體如下：

樣品厚度：STED顯微鏡要求樣品厚度通常不超過80微米，*佳厚度在20微米以內。若樣品過厚，需使用特殊物鏡（如水鏡）或犧牲部分分辨率，且厚樣品可能因球差和畸變影響成像質量，需通過自適應光學技術矯正。

光學特性：樣品需對受激輻射光無吸收，避免信號干擾。例如，某些染料或材料可能吸收STED損耗光（如775nm激光），導致分辨率下降或成像失敗。

熒光標記：

染料選擇：需根據STED損耗光的波長（如592nm、660nm、775nm）選擇匹配的熒光染料。例如，針對592nm損耗光，推薦使用mTFP1、eGFP等染料；針對775nm損耗光，推薦使用SiR Dyes、Alexa Fluor 647等染料。

標記密度：需優化標記密度，避免過度標記導致熒光信號飽和或背景噪聲增加。

熒光亮度與信噪比：樣品需具備足夠的熒光亮度和信噪比，否則STED效果可能較差或無法進行Z軸堆疊成像。

蓋玻片與封片劑：

蓋玻片：推薦使用標準厚度（0.170±0.01毫米）的蓋玻片，以確保光學路徑的穩定性。

封片劑：需選擇折射率接近1.518且不被損耗光激發的封片劑。例如，甘油與碳酸鹽緩沖液的混合液、含防淬滅劑的ProlongGold或Mowiol封片劑是推薦選擇；而Vectashield、DABCO/NPG等封片劑可能不適用。

活細胞成像條件：

光漂白與光毒性：STED顯微鏡的強激光可能對活細胞造成光損傷，需通過自適應照明技術（如RESCue、DyMIN）降低光照量，減少光漂白和光毒性。

細胞狀態：活細胞需保持良好狀態，避免因制備過程（如固定、脫水）導致細胞結構破壞或熒光信號減弱。

背景熒光控制：

避免強背景熒光：某些染料（如DAPI、Hoechst）可能被STED激發光激發，產生強背景熒光，影響成像質量。需選擇替代染料（如Picogreen標記細胞核）或優化成像參數（如調整激光功率、檢測波長）以降低背景。

多通道成像順序：

掃描順序優化：在多通道STED成像中，需注意掃描順序。例如，592nm的受激輻射光可能漂白大多數紅色或紅外熒光染料，需合理安排通道掃描順序以避免信號損失。