制作激光共聚焦顯微鏡的樣品是一個涉及多個步驟的過程，以下是一個清晰的制作流程，結合了參考文章中的相關信息：

1. 組織采集與固定

采集：根據實驗條件和目的采集不同來源的組織。

固定：

液氮冷凍法：新鮮組織采集后，直接放入液氮中保存。

多聚甲醛(PFA)固定法：適用于小鼠、大鼠等實驗動物的組織。將組織塊置于4% PFA中進行后固定，固定的時間可根據組織塊的大小和致密程度調整，如4℃固定過夜或室溫1～4 h。

2. 組織保存與預處理

洗滌：用0.01 mol/L PBS緩沖液洗3次，每次10～30 min。

脫水：在20%蔗糖中4℃浸泡1 h以上，待組織塊下沉后，即可進行后續步驟。

保存：組織塊可置于4℃冰箱保存于20%蔗糖(含0.05% NaN?)中，一個月內完成切片。

3. 冷凍包埋與切片

冷凍：

氣體CO?冷凍包埋法：將組織塊放在濾紙上吸取表面液體，放入樣品臺的冷凍包埋劑(OCT)中，用CO?氣體迅速冷凍組織樣品。

液氮冷凍法：將組織塊置于樣品臺的OCT中，先在液氮中迅速浸提幾次，直至樣品溫度與液氮溫度平衡，之后移至冷凍切片機中。

切片：使用冷凍切片機，將組織切成5～15 μm的切片，粘貼于處理過的載玻片上。

4. 免疫熒光抗體標記

切片處理：將冷凍組織切片從-80℃冰箱中取出，室溫放置10min，待切片回溫并干燥，浸于PBS中10min洗去OCT。

標記：無需Triton處理，即可進行免疫熒光抗體標記，操作步驟與培養細胞反應方法相同。

5. 封片與保存

封片：使用抗熒光淬滅的封片劑封片，以減少熒光信號丟失。

保存：4℃保存，等待觀察。

注意事項

樣品承載物：如觀察貼壁細胞或組織切片，可用普通載玻片和蓋玻片；如觀察懸浮細胞或懸浮粒子，可用共聚焦顯微鏡專用的培養皿。

染料選擇：根據共聚焦顯微鏡配備的激光器波長選擇熒光染料，避免不同熒光染料的發射波長重疊。

通過遵循以上步驟和注意事項，可以制作出適用于激光共聚焦顯微鏡的高質量樣品。